1. AREA DE BACTERIOLOGIA:
1.1 Entrenamiento en MICOBACTERIAS:
Preparación de medios de cultivo.
Procedimientos para el diagnóstico de TBC mediante cultivos.
Control de calidad de BK.
Pruebas de Sensibilidad, lectura e interpretación.
Sensibilidad a drogas de primera línea
1.2 Entrenamiento en ENTEROPATOGENOS:
Biotipificación de Salmonella, Shigella, Vibrio, E coli, Campylobacter, Citrobacter.
Pruebas de sensibilidad antimicrobiana.
1.3 Entrenamiento en ZOONOSIS BACTERIANA:
Pruebas serologicas para Leptospira y Brucelas
Pruebas serológicas para Peste.
Pruebas de aislamiento cultivo de Peste y Ántrax.
1.4 Entrenamiento en Infecciones Intrahospitalarias e IRAs
Procedimientos de laboratorio para el aislamiento e identificación de agentes causales de Infecciones Respiratorias Agudas (IRAS) Haemophilus influenzae , neumococo, meningococo A-C,
Procedimientos de laboratorio para el aislamiento , identificación y susceptibilidad antimicrobiana de agentes causales de infecciones Intrahospitalarias como: ( Enterobacterias, Pseudomonas, Enterococco y Estafilococco ).
1.5 Entrenamiento de BACTERIAS DE TRANSMISIÓN SEXUAL
Información teórica sobre los aspectos de: agente etiológico, comportamiento biológico, manifestaciones clínicas, diagnóstico bacteriológico (presuntivo y confirmatorio), obtención y procesamiento de la muestra de las Enfermedades de Transmisión Sexual como Gonorrea, sífilis y Chlamydia.
Procedimientos para el diagnóstico de sífilis mediante las Pruebas de tamizaje: RPR e inmunocromatografía y Pruebas confirmatorias: FTA-ABS y HATP.
Preparación de medios de cultivo para el aislamiento del gonococo.
Diagnóstico presuntivo de gonorrea mediante cultivo, coloración Gram, prueba de la oxidasa y superoxol.
Diagnóstico confirmatorio de gonorrea mediante pruebas bioquímicas.
Procedimientos para la detección de cepas de gonococo productoras de beta-lactamasa.
Serotipificación.
Diagnóstico de infección por Chlamydia mediante Inmunofluorescencia directa y cultivo celular.
1.6 Entrenamiento en METAXENICAS BACTERIANA:
Aislamiento e identificación de Rickettsias mediante el cultivo y la prueba de IFI.
Diagnóstico directo de la Enfermedad de Carrión mediante frotis sanguíneo.
Aislamiento mediante cultivos del agente causal de la Enfermedad de Carrión.
2. AREA DE PARASITOLOGÍA
2.1 Entrenamiento en MALARIA
Epidemiología de la Malaria
Diagnostico Parasitológico:
Obtención y coloración de muestras
Reconocimiento e identificación de P. vivax
Reconocimiento e identificación de P. falciparum.
Reconocimiento e identificación de P. Malariae
Diagnóstico inmunocromatográfico de malaria
Resistencia a los antimalaricos Densitometría parasitaria para evaluaciones in vivo
Control de calidad del diagnostico de malaria
Manejo de formato
Consolidado de información
Revisión de un artículo.
2.2 Entrenamiento en LEISHMANIA Y CHAGAS:
Diagnóstico parasitológico de Leishmania mediante frotis y cultivos.
Procedimientos de diagnóstico inmunológico de Leishmania, lectura e interpretación de resultados mediante IFI y la prueba de Montenegro.
Preparación de medios de cultivo.
Preparación de antígeno de Leishmania para IFI
Diagnóstico parasitológico de la Enfermedad de Chagas mediante frotis y cultivo
Diagnóstico serológico de la Enfermedad de Chagas, lectura e interpretación de resultados mediante la prueba de IFI y ELISA
Preparación de medios de cultivo para aislamiento de Trypanosoma.
Preparación de antígeno de Trypanosoma.
2.3 Entrenamiento en ENTEROPARÁSITOS:
Información teórica sobre enfermedades ocasionadas por parásitos intestinales, agente etiológico, biología, patología, manifestaciones clínicas, diagnóstico de laboratorio, distribución y prevención.
Métodos de diagnóstico.
Preparación de reactivos y colorantes.
Métodos de coloración de helmintos y protozoarios.
Fijación de muestras para conservación.
Micrometría.
2.4 Entrenamiento en ZOONOSIS PARASITARIA:
Procedimiento serológico para diagnóstico de cisticercosis.
Procedimiento serológico para diagnóstico de hidatidosis.
3. AREA DE VIROLOGÍA
3.1 Entrenamiento en ARBOVIRUS
Pruebas serológicas Dengue , Fiebre Amarilla y otros Arbovirus
Pruebas moleculares y virológicas Dengue y Fiebre Amarilla
Preparación de paneles de referencia para diagnóstico serológico de Dengue y Fiebre Amarilla.
3.2 Entrenamiento en VIRUS RESPIRATORIOS:
Pruebas de IFI
3.3 Entrenamiento en VIH y SIDA:
Pruebas de Tamizaje y confirmación para diagnostico de VIH-SIDA
Pruebas de monitoreo para pacientes de VIH- SIDA
3.4 Entrenamiento en HEPATITIS Y ENTEROVIRUS:
Teoría sobre la biología de los virus de la hepatitis, enterovirus y rotavirus.
Métodos de diagnóstico serológico y confirmatorio de las hepatitis y enterovirus.
Práctica demostrativa y dirigida de la técnica de ELISA directa e indirecta para el diagnóstico de las hepatitis.
Práctica demostrativa para el diagnóstico de la hepatitis C mediante el método LIA.
3.5 Entrenamiento en SARAMPIÓN Y RUBEOLA:
Información teórica se la vigilancia epidemiológica de Sarampión y Rubéola.
Teoría y práctica del diagnóstico de Sarampión y Rubéola mediante la prueba de ELISA.
Información teórica sobre el aislamiento de los virus del Sarampión y Rubéola.
4. AREA DE MICOLOGIA
re Test
Preparación de medios de cultivo y reactivos.
Diagnóstico de micosis superficial mediante examen directo y cultivo.
Diagnóstico de micosis oportunista mediante examen directo y cultivo.
Diagnóstico de micosis profundas y subcutáneas mediante examen directo y cultivo.
Diagnóstico serológico de micosis oportunista y profunda.
Revisión de fichas clínico-epidemiológicas
5. AREA DE BIOLOGIA MOLECULAR
Pruebas moleculares aplicadas a la investigación de enfermedades Transmisibles
6. AREA DE PATOLOGÍA CLÍNICA Y ANATOMÍA PATOLÓGICA
6.1 Entrenamiento en Patología Clínica
Pruebas bioquímicas
Control de calidad interno de las pruebas bioquímicas.
6.2 Entrenamiento en Anatomía patológica:
Inclusión, procesamiento de tejidos
Coloraciones especiales
Inmunohistoquímica