1. AREA DE BACTERIOLOGIA:
1.1 Entrenamiento en MICOBACTERIAS:
Preparación de medios de cultivo.Procedimientos para el diagnóstico de TBC mediante cultivos.Control de calidad de BK.Pruebas de Sensibilidad, lectura e interpretación.
1.2 Entrenamiento en ENTEROPATOGENOS:
Biotipificación de Salmonella, Shigella, Vibrio, E coli, Campylobacter, Citrobacter.Pruebas de sensibilidad antimicrobiana.
1.3 Entrenamiento en ZOONOSIS BACTERIANA:
Diagnóstico de Leptospira por ELISA y MAT.Diagnóstico de Brucelosis por serología
1.4 Entrenamiento en INFECCIONES INTRAHOSPITALARIAS E IRAS:
Procedimientos de laboratorio para el aislamiento e identificación de agentes causales de Infecciones Respiratorias Agudas (IRAS) como Haemophilus influenzae , neumococo, meningococo A-CProcedimientos de laboratorio para el aislamiento, identificación y susceptibilidad antimicrobiana de agentes causales de Infecciones Intrahospitalarias como: Enterobacterias, Pseudomonas, Enterococco y Stapylococco.
1.5 Entrenamiento de BACTERIAS DE TRANSMISIÓN SEXUAL:
Información teórica sobre los aspectos de: agente etiológico, comportamiento biológico, manifestaciones clínicas, diagnóstico bacteriológico (presuntivo y confirmatorio), obtención y procesamiento de la muestra de las Enfermedades de Transmisión Sexual como Gonorrea, sífilis y Chlamydia.Procedimientos para el diagnóstico de sífilis mediante las Pruebas de tamizaje: RPR e inmunocromatografía y Pruebas confirmatorias: FTA-ABS y HATP.Preparación de medios de cultivo para el aislamiento del gonococo.Diagnóstico presuntivo de gonorrea mediante cultivo, coloración Gram, prueba de la oxidasa y superoxol.Diagnóstico confirmatorio de gonorrea mediante pruebas bioquímicas.Procedimientos para la detección de cepas de gonococo productoras de beta- lactamasa.Serotipificación.Diagnóstico de infección por Chlamydia mediante Inmunofluorescencia directa y cultivo celular.
1.6 Entrenamiento en METAXENICAS BACTERIANA:
Aislamiento e identificación de Rickettsias mediante el cultivo y la prueba de IFI.Diagnóstico directo de la Enfermedad de Carrión mediante frotis sanguíneo.Aislamiento mediante cultivos del agente causal de la Enfermedad de Carrión.
2. AREA DE PARASITOLOGÍA
2.1 Entrenamiento en MALARIA
Epidemiología de la Malaria
Diagnostico Parasitológico:
Obtención y coloración de muestras
Reconocimiento e identificación de P. vivaxReconocimiento e identificación de P. falciparum.Reconocimiento e identificación de P. MalariaeDiagnóstico inmunocromatográfico de malariaResistencia a los antimalaricosDensitometría parasitaria para evaluaciones in vivioControl de calidad del diagnostico de malariaManejo de formato. Consolidado de informaciónRevisión de un artículo.
2.2 Entrenamiento en LEISHMANIOSIS Y CHAGAS:
Diagnóstico parasitológico de Leishmania mediante frotis y cultivos.Procedimientos de diagnóstico inmunológico de Leishmania, lectura e interpretación de resultados mediante IFI y la prueba de Montenegro.Diagnóstico parasitológico de la Enfermedad de Chagas mediante frotis y cultivoDiagnóstico serológico de la Enfermedad de Chagas, lectura e interpretación de resultados mediante la prueba de IFI y ELISA.
2.3 Entrenamiento en ENTEROPARÁSITOS:
Información teórica sobre enfermedades ocasionadas por parásitos intestinales, agente etiológico, biología, patología, manifestaciones clínicas, diagnóstico de laboratorio, distribución y prevención.Métodos de diagnóstico.Preparación de reactivos y colorantes.Métodos de coloración de helmintos y protozoariosMicrometría.
2.4 Entrenamiento en Zoonosis parasitaria:
Procedimiento serológico para diagnóstico de enfermedades parasitarias.
3. AREA DE VIROLOGÍA
3.1 Entrenamiento en Arbovirus
Pruebas de diagnóstico serológico, virológico y molecular para Fiebre Amarilla y Dengue.
3.2 Entrenamiento en Virus respiratorios:
Pruebas de diagnóstico por IFIAislamiento viral
3.3 Entrenamiento en VIH y SIDA:
Pruebas de Tamizaje para VIH y otros ETS virales.Pruebas de confirmación para VIH y otros ETS virales.
3.4 Entrenamiento en HEPATITIS Y ENTEROVIRUS:
Teoría sobre la biología de los virus de la hepatitis, los enterovirus y rotavirus.Métodos de diagnóstico serológico y confirmatorio de la hepatitis y enterovirus.Práctica demostrativa y dirigida de la técnica de ELISA directa e indirecta para el diagnóstico de las hepatitis.Práctica demostrativa para el diagnóstico de la hepatitis C mediante el método LIA.
3.5 Entrenamiento en SARAMPIÓN Y RUBÉOLA:
Información teórica de la vigilancia epidemiológica de Sarampión y Rubéola.Teoría y práctica del diagnóstico de Sarampión y Rubéola mediante la prueba de ELISA.Información teórica sobre el aislamiento de los virus del Sarampión y Rubéola.
3.6 Entrenamiento en Zoonosis Virales (Rabia)
Información teórica de la patogenia del virus rábicoInformación teórica sobre el diagnóstico de la rabiaRegistro , manejo y conservación de de las muestrasProcesamiento de la técnica de IFI e inoculación en ratón para el diagnóstico de rabiaLectura e interpretación de las láminasPreparación de la suspensión viral para la prueba de inoculación en ratón.Inoculación en ratones.
4. AREA DE MICOLOGIA
Preparación de medios de cultivo y reactivos.Diagnóstico de micosis superficial mediante examen directo y cultivo.Diagnóstico de micosis oportunista mediante examen directo y cultivo.Diagnóstico de micosis profundas y sub cutánea mediante examen directo y cultivo.
5. AREA DE BIOLOGIA MOLECULAR
Técnicas moleculares aplicadas a la investigación.
6. AREA DE PATOLOGÍA CLÍNICA Y ANATOMÍA PATOLÓGICA
6.1 Entrenamiento en Patología Clínica
Pruebas bioquímicasControl de calidad interno de las pruebas bioquímicas.
6.2 Entrenamiento en Anatomía patológica:
Inclusión, procesamiento de tejidosColoraciones especialesInmunohistoquímica
7. AREA DE RECEPCIÓN Y OBTENCIÓN DE MUESTRAS
Obtención de muestrasRecepción, codificación, ingreso en base de datos.